ü 1 этап. Дезинфекция.
Цель: Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.
Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.
Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).
Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.
Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).
ü 2 этап. Предстерилизационная очистка (ПСО).
Цель: Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.
Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.
Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.
Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.
Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.
Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.
Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).
ü 3 этап. Стерилизация.
Цель: Уничтожение споровых форм микробов.
Сухожаровой метод:
Ø Инструментарий разложен равно на подносе.
Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.
Ø Использовать в течение рабочей смены.
Автоклавирование:
Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.
Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.
Химический метод:
Ø Погрузить в 1 из растворов:
v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.
v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.
Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.
Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.
Ø Использовать в течение 3 сут.
Оценка результата:
Обработка операционного поля (ОП):
Последовательность действий: Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.
ü К плановой операции:
Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).
Ø Смена постельного и нательного белья.
Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.
ü К экстренной операции:
Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.
Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.
ü На операционном столе:
Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.
Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.
Ø Ограничить ОП стерильным бельём.
Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.
Ø Обработать ОП перед наложением швов.
Ø Обработать ОП после наложения швов.
ü По ОСТу 42-21-2-85: 1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.
Ø Примечания:
v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.
v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.
v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.
Оценка результата: можно проверить только бактериологическим путём.
Контроль стерилизации.
ü Прямой метод:
Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).
ü Непрямой метод:
Ø С помощью индикаторов. Меняют цвет. При закладке светлые – 120 0 С слегка песочного цвета – 132 0 С светло-коричневые – 180 0 С тёмно-коричневые (почти чёрные).
Ø С помощью химических веществ. Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.
Ø С помощью термо-временных индикаторов. Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).
Надевание стерильного халата:
ü На себя. М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.
ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. - Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.
Надевание стерильных печаток:
ü На себя. М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.
Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.
Перчатки снимать так , чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.
ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.
Виды перчаток:
ü Синтетические. - Латексные.
ü Опудренные. - Неопудренные.
ü Диагностические. - Хирургические.
ü Стерильные. - Нестерильные.
Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.
Средства для дезинфекции и стерилизации:
ü Лизоформин–3000. Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.
ü Бланизол. Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.
ü Дезоформ. Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.
ü Лизанол. Кожный антисептик .
ü Хлорапин. Обработка всего. В таблетках и гранулах.
ü Амидин. Кожный антисептик . Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.
Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:
Оснащение: Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.
Алгоритм:
ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя .
ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.
ü Достать щипцами 1 простыню . Развернуть в 1 слой . Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола , но не касалась пола.
ü 2 простынь в 2 слоя . Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см .
ü 3 простынь в 2 слоя . Так, чтобы свисала с края стола на 10 см .
ü 4 простынь так же как 3 .
ü 5 простынь в 1 слой . Так, чтобы перекрыла край 2 простыни .
ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.
ü Поднимаем простынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе . Последнее направление на себя.Кладём корнцанги кольцами друг к другу.
ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3 . Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапки кладём кольцами друг к другу .
ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем . Берём корнцанги иперекрываем .
Стерилизация в хирургии — используется для обеззараживания операционного белья, перевязочного материала, инструментов и некоторых аппаратов, применяемых во время операций и перевязок.
Операционное белье (халаты, простыни, полотенца, маски) и перевязочный материал (марлевые тампоны, салфетки и вата) стерилизуются паром под давлением в автоклаве.
Как исключение (при отсутствии автоклава) прибегают к стерилизации текучим паром. При этом пар, нагретый до t° 100°, проходит через заложенные в аппарат биксы и выходит наружу. Такая стерилизация ненадежна, т. к. убивает не все бактерии (спороносные гибнут при t° выше 120°). Белье и перевязочный материал складывают в форме, наиболее облегчающей его употребление и предотвращающей излишние манипуляции с ним. Подготовку белья и материала производит медсестра, одетая в халат, шапочку или косынку. Люди с гнойничковыми заболеваниями не должны принимать в этом участия. Подготовленный материал и белье укладывают в металлические барабаны Шиммельбуша (биксы), причем в большие биксы укладывают халаты, простыни, полотенца, большие салфетки и тампоны, в маленькие — маски, маленькие салфетки, шарики и вату. Размещение белья и материала должно быть рыхлым. Простыни, халаты, салфетки и т. д. следует укладывать не горизонтальными, а вертикальными слоями. В крупных операционных укладку производят так, чтобы в каждом биксе находился один какой-либо вид белья или материала. В небольших операционных, а особенно для выездов на экстренную операцию, в один бикс закладывают все необходимое для производства одного вмешательства, притом так, чтобы любой предмет можно было извлечь, не касаясь всех остальных. Поверх всего содержимого помещают халат, шапочку, маску для операционной медсестры, которая первой проводит личную асептическую подготовку.
При стерилизации в автоклаве используют водяной насыщенный пар t° 120— 132° под давлением 1,5—2 атм. Бактерицидные свойства пара усиливаются, если удалить из стерилизуемого материала воздух. Однако это затрудняется тем, что материал находится в биксах. В учреждениях, где имеются большие автоклавы, воздух удаляют при помощи вакуум-насосов. При отсутствии насоса воздух удаляют продувкой — в течение 10 мин. стерилизационная камера работает как текучепаровая установка, т. е. при открытом выходном кране, который затем закрывают. Время стерилизации зависит от давления и качества стерилизуемого материала. Отсчет времени начинают с момента установления требуемого давления и температуры. Одномоментно в автоклав следует закладывать биксы с однородным материалом. При стерилизации биксов с разнородным материалом время устанавливают по материалу, требующему большей продолжительности стерилизации. Перед закладкой в автоклав в биксе открывают все отверстия. Автоклав следует загружать из расчета 65—94 кг белья или материала на 1 м3 объема аппарата. Продолжительность стерилизации белья при давлении 2 am — 30 мин., 1,5 am — 45 мин.; для перевязочного материала — при 2 am — 20 мин., при 1,5 am — 30 мин. По окончании стерилизации автоклав открывают через 5—10 мин. после удаления пара (это необходимо для просушки материала). При выемке биксов отверстия в них тотчас закрывают.
Контроль над стерильностью материала осуществляют при каждой стерилизации физическими и химическими методами. Наиболее надежен биологический контроль. Пользоваться им следует для периодического контроля стерилизации, например раз в месяц, а также в случаях появления нагноений после «чистых» операций.
Стерилизация тазов для мытья рук производят обжиганием. В таз наливают 10— 15 мл денатурированного спирта и поджигают. Вращением таза в разных плоскостях обжигают всю его внутреннюю поверхность. Применение для этих целей эфира недопустимо из-за возможности взрыва.
Катетеры, трубки, дренажи стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 минут. Новые резиновые изделия перед кипячением промывают теплой проточной водой для удаления талька. Хранить их можно в растворе, который применяют для стерилизации перчаток.
Условия стерилизации резиновых изделий в автоклаве аналогичны условиям, принятым для стерилизации перчаток. Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1—2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды — стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов — 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа.
Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180— 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.
Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты — 3 части, едкого натра — 15 частей, формалина — 20 частей, дистиллированной воды — 1000 частей; формалина — 20 частей, фенола чистого жидкого — 1,5 части, карбоната натрия — 7,5 части, воды дистиллированной — 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом.
Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45—50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация — суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами — в отдельной упаковке).
Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6—8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) — 100 г, нашатырного спирта — 50 мл, воды — 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части — контрольные стекла и капельницы — промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно — проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30—40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, т. к. они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.
Стерилизация анестезиологических принадлежностей — интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок — осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида; водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5—2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15—30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части — переходные трубки, щипцы, зубные распорки — стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением. Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30—40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.
Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов — производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке.
Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am
в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде — 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150—160° — 1 час.
Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.
Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12—24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.
Часто применяют модификации способа Кохера:
1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№ 0—4 в течение 15 мин., № 5—8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.
Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в т. ч. и в сулеме.
Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк
, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.
Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала — кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12—24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№ 0—1 на 30 сек., № 2—5 на 1 мин., № 6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6—7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке — 40 г, в 5-литровой банке — 60 г). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным № 0—1 — через 3 суток, № 2—4 — через 4 суток, № 5—6 — через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.
Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г чистого йода и 10 г калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.
Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г йода и 10 г калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7—10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г калия йодида и 10 г чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8—10 суток после выдерживания его в течение 12—24 час. в эфире, а затем на 4— 6 суток — в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7—10 суток.
Стерилизация инструментария, в т. ч. и режущего, возможна при помощи ультразвука. Преимущество этого метода в том, что ультразвук осуществляет и механическую очистку инструментов от крови и гноя, не повреждая их. Инструменты помещают в сосуды с дистиллированной водой, туда же опускают излучатель. Применяют ультразвук частотой 800 кгц, мощностью 20—30 вт/см. Через 10 мин. достигается полная механическая очистка и стерильность. Очень эффективна стерилизация белья, перевязочного материала инструментария, аппаратуры, растворов и т. п. гамма-излучением. Доза проникающей радиации должна быть не менее 2 000 000 — 2 500 000 рентген.
Каждый из нас хотя бы раз в своей жизни задавался вопросом стерилизации инструмента для хирургических манипуляций. Даже если Вы брали обычную иглу для выковыривания занозы и предварительно протёрли её об край футболки (в лучшем случае ваткой со спиртом). Более суровые выживальщики обжигают кончик ножа над пламенем для того, чтобы потом вырезать вражескую пулю из своей ягодицы…
В этой публикации я хочу поведать Вам основные моменты подготовки хирургического инструмента перед его применением. Итак, начнём…
ВНИМАНИЕ!
Данный текст был откорректирован с помощью моих коллег и ввиду многих неточностей. За что им огромное спасибо. Так же должен просить прощения у читателей за допущеные ошибки. В моей практике используют методы, предусматривающие использование готовых растворов и спецапаратуры (автоклавы и сухожаровые шкафы). Старался описать более древние (и доступные) методы, опираясь на общедоступные источники, посему столько неточностей._______________________________________________________________________________
Сразу скажу, что стерилизация есть только одной (заключительной) частью всей подготовки хирургического инструмента. Всего таких частей выделяют три: дезинфекция, мытьё*, собственно стерилизация. Сразу хочу внести ясность. Различие между дезинфекцией и стерилизацией состоит в том, что дезинфекция предусматривает уничтожение патогенных микробов (тех, которые вызывают болезни), а стерилизация - уничтожение абсолютно всех. [Дезинфекция - уничтожение всех микроорганизмов. Стерилизация - уничтожение всех микроорганизмов и их спор
]
* - современная хирургия объединяет дезинфекцию и мытьё в общее понятие «предстерилизационная подготовка», но это касается только терминов… суть от этого не меняется
Дезинфекция.
Только что использованый инструмент загрязнён кровью, гноем и другими биологическими жидкостями. Он является инфицированым . Проводить с ним какие-либо манипуляции очень опасно - любой случайный порез, прокол или просто контакт с повреждённой кожей могут привести к тому, что Вы заразитесь какой-то гадостью. Посему использованый инструмент сразу же после операции погружается в ванночку с дезинфицирующим средством. При этом он должен быть полностью погружён в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40 -60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут)*. После обеззараживания инструмент промывается проточной водой для удаления дезинфицирующего средства. Процедура обязательно должна проводится в перчатках (для защиты себя от заразы).* - Надо учесть тот факт, что при обработке (замачивании) большого количества инструментов, особенно если они обильно загрязнены кровью или гноем, со временем активность дезинфицирующего раствора падает. Но в данном случае мы рассматриваем одного выживальщика, и его суточный оборот инструментов будет ничтожным по сравнению с таковым у областного стационара.
Мытьё.
Теперь наш инструмент не заражён. Но на нём всё ещё присутствует «грязь» в виде остатков тканей, лекарств. Теперь эту всю гадость надо отмыть. Инструмент погружается в специальный моющий (щелочной) раствор, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода*. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде. Эти манипуляции надо тоже проводить в перчатках для защиты себя от агрессивных химических веществ.Пропорции:После мытья инструмент необходимо просушить. Высушивание может осуществляться естественным путем. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.
Вода - 978 мл.
Перекись водорода (27,5%) - 17 мл. (!!! - Именно такая большая концентрация, изготовляется путём разведения 33% пергидроля.)
Стиральный порошок - 5 г.
Те дезинфицирующие и моющие средства, которые я описал, использовались в медицине до недавнего времени и для нас они имеют одно преимущество - они более-менее доступны. Современная медицина имеет много специально разработанных средств, которые совмещают в себе свойства дезинфицирующих и моющих средств. Таким образом, два отдельных этапа слились в один, когда инструмент сперва погружается в раствор, киснет дезинфицируется там, а потом в нём же и отмывается щёткой.
Стерилизация.
Итак, наш инструмент продезинфицирован, чист и высушен. Теперь он готов к тому, чтобы мы проводили его стерилизацию. Методы её проведения бывают разными. Есть много классификаций, но мне лично нравится делить их на два типа: горячий и холодный . Выбор типа стерилизации зависит от типа инструмента или материала. Не забывайте, что стерилизации должно подвергаться всё, что соприкасается с раной , и если Вы думаете, что это только пинцет и скальпель, то вы глубоко заблуждаетесь. Сюда относятся и резиновые перчатки (когда-то они были многоразовыми), и перевязочный материал, и оптическая апаратура (для лапараскопических операций). Горячий способ более прост в своём применении, более надёжен, но как Вы представляете себе прожаривание деликатной оптики или пластика/резины?В связи с этим, все подлежащие стерилизации инструменты условно поделяются на группы:
1. Металлические:
а) тупые (пинцеты, зажимы, иглодержатели...);
б) колюще-режущие (иглы, скальпели, ножницы...);
2. Содержащие пластиковые/резиновые компоненты.
3. Оптика.
Горячим способом без каких-либо последствий можно стерилизовать только инструменты, относящиеся к категории 1.а). Колющие и режущие предметы при воздействии высоких температур очень быстро тупятся и приходят в негодность. Хотя если нет иного выхода, то их тоже можно поддавать термообработке. Так же резиновые перчатки могут выдержать несколько циклов горячей стерилизации.
Горячие методы стерилизации:
Обжигание и кипячениеОбжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов не используется. Метод можно применять в домашних условиях при невозможности использования других. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Обычно на металлический поднос кладут инструмент, наливают небольшое количество этилового спирта и поджигают его. [метод с поджиганием спирта не выдерживает никакой критики и не может применяться для стерилизации ]
Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий.
Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия - до 2% раствора).
Обычное время стерилизации - 30 минут с момента закипания.
После окончания стерилизации сетку с инструментами достают с помощью специальных стерильных ручек.
Стерилизация паром под давлением (автоклавирование)
В автоклаве (аппарат для стерилизации паром под давлением) возможно нагревание воды при повышенном давлении. Это повышает точку кипения воды и соответственно температуру пара до 132,9°С (при давлении 2 атмосферы).
Хирургические инструменты, перевязочный материал, белье и другие материалы загружаются в автоклав в специальных металлических коробках - биксах Шиммельбуша. Биксы имеют боковые отверстия, которые открывают перед стерилизацией. Крышку бикса плотно закрывают.
После загрузки биксов автоклав закрывают герметичной крышкой и производят необходимые манипуляции для начала его работы в определенном режиме. Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра.
Существует три основных режима стерилизации:
при давлении 1,1 атмосферы - 1 час,
при давлении 1,5 атмосферы - 45 минут,
при давлении 2 атмосферы - 30 минут.
По окончании стерилизации биксы некоторое время остаются в горячем автоклаве для просушки при слегка приоткрытой дверце. При извлечении биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках биксов и отмечают дату стерилизации (обычно на прикрепленном к биксу кусочке клеенки). Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нем предметов в течение 72 часов.
Стерилизация горячим воздухом (сухим жаром)
Действующим агентом при этом способе стерилизации является нагретый воздух. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах.
Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30 минут при температуре 80°С с приоткрытой дверцей. Стерилизация осуществляется при закрытой дверце в течение 1 часа при температуре 180°С. После этого при остывании шкафа-стерилизатора до 50-70°С дверцу приоткрывают и при окончательном остывании разгружают камеру со стерильным инструментарием.
Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время является главным, наиболее надежным способом стерилизации хирургических инструментов.
В связи с этим в стационарах обычно выделяются специальные центральные стерилизационные отделения (ЦСО), где с помощью двух этих методов осуществляется стерилизация наиболее простых и часто используемых инструментов со всех отделений больницы (шприцы, иглы, простые хирургические наборы, зонды, катетеры и пр.).
Холодные методы стерилизации:
Лучевая стерилизацияАнтимикробная обработка может быть осуществлена с помощью ионизирующего излучения (гамма-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наибольшее применение в наше время получила стерилизация гамма-лучами.
Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной - до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится).
Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку). Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и пр.) и получает все более широкое распространение. Во многом это объясняется тем, что при лучевой стерилизации нисколько не теряются свойства стерилизуемых объектов.
Газовая стерилизация
Газовая стерилизация осуществляется в специальных герметичных камерах.
Стерилизующим агентом обычно являются: пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида [параформа ]) или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считаются стерильными через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере).
Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.
В отличие от лучевой стерилизации, метод используется непосредственно в стационарах.
Стерилизация растворами антисептиков
Стерилизация растворами химических антисептиков, также как лучевая и газовая стерилизация, относится к холодным способам стерилизации и не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов.
Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор*, 96° этиловый спирт [этиловый спирт должнен быть только 70°, посколько именно такая концентрация наиболее эфективно убивает микроорганизмы
] и 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие.
Тройной раствор:
карболовая кислота - 3 г,
формалин - 20 г,
сода - 15 г,
вода - 1000 мл.
Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов.
Считаю этот метод самым оптимальным для использования «в поле».
Часть информации (в виде готового текста) была взята мной из этого сайта. Тем, кто интересуется хирургией, могу порекомендовать его. Информация хорошо систематизирована, подана в доступом виде и не слишком специализирована. О хирургии в общих чертах.
Спасибо за внимание.
Основным способом стерилизации хирургических инструментов является кипячение .
Для кипячения используют простые или электрические стерилизаторы, эмалированную посуду с крышкой.
Источником тепла может служить газовая или электрическая плита. Кипячением стерилизуют металлические, стеклянные, резиновые предметы. Перед кипячением инструменты разбирают, раскрывают, из инъекционных игл извлекают мандрены, а стеклянные и острые части инструментов заворачивают в 1-2 слоя марли. Кипятят в воде или в растворах каустической или двууглекислой соды. Продолжительность стерилизации с момента закипания воды составляет 20 минут, в щелочных растворах — 10-20. По истечении указанного срока сетку с инструментарием извлекают из стериализатора с помощью специальных крючков, а инструменты раскладывают на стерильную ткань или оставляют в стерилизаторе, предварительно слив воду. Шприцы обычно оставляют в воде до полного их охлаждения.
Стеклянные хирургические инструменты (шприцы), приборы (пробирки, мензурки) кипятят отдельно от металлических инструментов без добавления щелочей.
Резиновые предметы (трубки, перчатки, катетеры, дренажи) стерилизуют в автоклаве или в кипящей воде в течение 30 минут. Можно обрабатывать и химическими растворами путем погружения. Перчатки, надетые на руки, рекомендуют обрабатывать спиртовым раствором формалина.
Стерилизацию обжиганием (фламбированием) применяют для обеззараживания крупных инструментов и эмалированной посуды (тазы под инструменты). Инструменты кладут в эмалированную посуду или стерилизатор, обливают их небольшим количеством спирта и обжигают. Металлические инструменты можно фламбировать на огне спиртовки или подожженной ваты, смоченной спиртом. Данный метод стерилизации не очень хорош, так как в отверстиях, замках инструментов могут оставаться сгустки крови, шерсть, бактерии, а сами инструменты, особенно режущие их части, при обжигании сильно портятся.
Стерилизация инструментов химическими средствами относится к холодному способу стерилизации. Инструментарий полностью погружают на 30-60 минут в дезинфицирующие растворы: лизол, карболовая кислота, жидкость Каретникова, формалин, натрий карбонат, этиловый спирт, или на 4-6 часов — в перекись водорода. Антисептические растворы применяют и в случае, когда инструменты портятся от кипячения. Возможна газовая стерилизация, проводимая в специальных камерах и применяемая для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.
Стерилизуют хирургические инструменты и сухим воздухом (сухим жаром, в специальных термостатах) в течение 1,5 часа при определенной постоянной температуре.
В медицинской практике используют заводской метод стерилизации — гамма-лучами, ультрафиолетовыми лучами, ультразвуком (по строго определенным методикам).
Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter .
Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые,
оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Стерилизация режущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).
Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде.
Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180- 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным. Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды. Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде.
